Đánh giá hoạt tính chống oxy hóa của nấm đông trùng hạ thảo (Cordyceps militaris) trên các môi trường nuôi cấy bổ sung nguồn Nitơ và Carbon
Từ khóa
Tóm tắt
Nấm Đông trùng hạ thảo (Cordyceps militaris) là 1 loại nấm dược liệu có các đặc tính chống oxy hóa, có tác dụng chống ung thư, bảo vệ gan và chống viêm, bảo vệ thận và chống nhiễm trùng. Nghiên cứu môi trường rắn làm tăng hàm lượng dược liệu của loài nấm này được thực hiện trên 9 môi trường nuôi trồng. Mỗi môi trường chứa nguồn carbon (glucose, frutose) và nitơ (nhộng tằm khô, cao nấm men, peptone) khác nhau. Hoạt tính chống oxy hóa của dịch chiết được xác định bằng hàm lượng polysacharide và tỷ lệ bắt gốc tự do DPPH (2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl). Nghiên cứu cho thấy hàm lượng polysaccharide và tỷ lệ bắt gốc tự do của nấm C. militaris lần lượt là 73,24 g/mL và 82,74%. Môi trường thích hợp để nuôi cấy nấm đông trùng hạ thảo cho hoạt tính chống oxy hóa tốt nhất trong thí nghiệm là 0,1g/L KH2PO4; 0,1g/L MgSO4; 0,3g/L Vitamin B1, 20g/L glucose và 20g/L cao nấm men.##plugins.themes.default.displayStats.downloads##
Tài liệu tham khảo
[1]. Shrestha, B., Zhang, W., Zhang, Y., Liu, X., (2012). “The medicinal fungus Cordyceps militaris: research and development”. Mycol. Prog. 11, 599-614.
[2]. Anupreet Kaur (2020). “Isolation and characterisation of polysaccharides from traditionally known Chinese medicinal mushrooms”, Thesis of Master, School of Science Western Sydney University, Australia.
[3].Kim, Y.O.; Han, S.B.; Lee, H.W.; Ahn, H.J.; Yoon, Y.D.; Jung, J.K (2005). “Immunostimulating effect of the endo-polysaccharide produced by submerged culture of Inonotus obliquus”. Life Sci., 77, 2438–2456. [CrossRef] [PubMed].
[4]. Park, S.E.; Kim, J.G.; Lee, Y.W.; Yoo, H.S.; Cho, C.K (2009). “Antitumor activity of water extracts from Cordyceps militaris in NCI-H460 cell xenografted nude mice”. J. Acupunct. Meridian Stud., 2, 294–300. [CrossRef].
[5]. Rao, Y.K.; Fang, S.H.; Wu, W.S.; Tzeng, Y.M. (2010) . “Constituents isolated from Cordyceps militaris suppress enhanced inflammatory mediator’s production and human cancer cell proliferation”. J. Ethnopharmacol, 131, 363–367. [CrossRef] [PubMed].
[6]. Cui, J. (2014). “Biotechnological production and applications of Cordyceps militaris, a valued traditional Chinese medicine”. Critical Reviews in Biotechnology. 1-10.
[7]. Luo, X., Y. Duan, W. Zhang, C. Li, and J. Zhang. (2017). “Structural elucidation and immunostimulatory activity of polysaccharide isolated by subcritical water extraction from Cordyceps militaris”. Carbohydrate Polymers. 157: 794-802
[8]. Wang, B., C. Lee, Z. Chen, H. Yu, and P. Duh. (2012). “Comparison of the hepatoprotective activity between cultured Cordyceps militaris and natural Cordyceps sinensis”. Journal of Functional Foods. 4: 489- 495.
[9]. Dang, H., C. Wang, and H. Lay. (2018). “Effect of nutrition, vitamin, grains, and temperature on the mycelium growth and antioxidant capacity of Cordyceps militaris (strains AG-1 and PSJ-1)”. Journal of Radiation Research. 11: 130-138
[10]. Kang, N., H. Lee, I. Park, and Y. Seo. (2017). “Development of high cordycepin-producing Cordyceps militaris strains”. Mycobiology. 45: 31-38
[11]. Yang, S., L. Jin, X. Ren, J. Lu, and Q. Meng. (2014). “Optimization of fermentation process of Cordyceps militaris and antitumor activities of polysaccharides in vitro”. Journal of Food and Drug Analysis. 22: 468-476.
[12]. Qin, Q., G. Zhou, H. Zhang, Q. Meng, J. Zhang, H. Wang, L. Miao, and X. Li. (2018). “Obstacles and approaches in artificial cultivation of Chinese Cordyceps”. Mycology. 9: 7-9.
[13]. Jeong Seok Kwon, Jong Seok Lee, Won Cheol Shin, Keun Eok Lee & Eock Kee Hong (2010). “Optimization of culture conditions and medium components for the production of mycelial biomass and exo-polysaccharides with Cordyceps militaris in liquid culture”. Biotechnology and Bioprocess Engineering.Volume 14, pages 756–762
[14]. Tang, Q.L.; Huang, G.L. (2018). “Preparation and antioxidant activities of cuaurbit polysaccharide”. Int. J. Biol. Macromol. 117, 362–365
[15]. Brand-Williams, W., Cuvelier, M.E. and Berset, C.L.W.T. (1995) “Use of a Free Radical Method to Evaluate Antioxidant Activity”. LWT-Food Science and Technology, 28, 25-30. http://dx.doi.org/10.1016/S0023-6438(95)80008-5
[16]. Zhongyang Ding, Wangfei Wang, Feng Wang, Qiong Wang and Kechang Zhang, (2012). “Polysaccharides production by submerged fermentation of Coprinus comatus and their inhibitory effects on non-enzymatic glycosylation”. Journal of Medicinal Plants Research Vol. 6(7), pp. 1375-1381.
[17]. Chien-Chang Wang, Jiun-Yan Wu, Chih-Yuan Chang, Shih-Tsung Yu and Yung-Chuan Liu (2019). “Enhanced exopolysaccharide production by Cordyceps militaris using repeated batch cultivation”. Journal of Bioscience and Bioengineering, Volume 127, Issue 4, Pages 499-505.
[18]. Ling Xu, Feng Wang, Zhicai Zhang and Norman Terry. (2019). “Optimization of Polysaccharide Production fromCordyceps militaris by Solid-State Fermentation onRice and Its Antioxidant Activities”. Foods 8(11), 590; https://doi.org/10.3390/foods8110590
[19]. Albalasmed, A.A., A.A. Berhe and T.A. Ghezzehei. (2013). “A new method for rapid dertermination of cacbohydrate and total carnon concentrations using UV spectrophotometry”. Carbohydrate Polymers, 97:253-261.
[20]. Lazo-de-la-Vega-Monroy, M-L. & Fernández-Mejía, C. (2013), “Oxidative Stress in Diabetes Mellitus and the Role Of Vitamins with Antioxidant Actions, Oxidative Stress and Chronic Degenerative Diseases - A Role for Antioxidants”, Dr. Jose Antonio Morales-Gonzalez (Ed.), 2013; ISBN: 978-953-51-1123-8, InTech, DOI:10.5772/51788. pp. 209 – 232.
